STUDY OF EMBRYOGENIC CAPACITY OF DIFFERENT GENOTYPES OF WINTER RAPE IN IN VITRO CULTURE
Abstract
Embryogenic capacity of winter rape samples of different origin is studied. Variety specificity for the given trait is determined and the most promising varieties are identified. It’s established that cold pretreatment of donor plants and a type of inflorescence, from which explants are extracted, have the greatest effect on the increase of embryoid output. Cold pretreatment of selected donor buds increases embryoid output, however it is less effective than cold pretreatment of donor plants. It’s identified that the optimal period for selection of donor material is 12-20 days from the beginning of winter rape budding.
About the Authors
E. N. Kulinkovich
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
Ya. E. Piliuk
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
N. L. Ermolenko
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
I. N. Sinitsa
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
N. N. Bobko
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
E. F. Barchevskaya
РУП «Научно-практический центр НАН Беларуси по земледелию»
Belarus
Belarus
References
1. Абадовская, Т.В. Особенности андрогенеза in vitro в процессе создания дигаплоидных линий рапса: автореф. дис. … канд. биол. наук: 03.00.15 / Т.В. Абадовская ; Ин-т генетики и цитологии. – Минск, 1994. – 18 с.
2. Анапияев, Б.Б. Гаплоидная биотехнология в ускоренной селекции Triticum aestivum L. / Б.Б. Анапияев, К.И. Искакова // Биотехнологические приемы в сохранении биоразнообразия и селекции растений: матер. Межд. науч.конф. 18–20 августа 2014 г., Минск. – Минск: ГНУ «Центральный ботанический сад Академии наук Беларуси», 2014. – С. 20-22.
3. Башабаева, Б.М. Культура изолированных микроспор в создании генетически однородных и стабильных дигаплоидных генотипов ячменя / Б.М. Башабаева [и др.] // Eurasian Jornal of Applied Biotechnology. – 2013. – №1. – C. 24-27.
4. Беккужина, С.С. Селекция пшеницы на устойчивость к грибному патогену Septoria nodorun Berk. в культуре изолированных пыльников / С.С. Беккужина, Е.А. Калашникова // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. – 2009. – №4. – С. 6-8.
5. Белинская, Е.В. Эффективность получения андрогенных гаплоидов ячменя в зависимости от способа регенерации растений, состава питательной среды и плотности инокуляции пыльников / Е.В. Белинская // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2013. – Т.15, №3 (5). – С. 1571-1574.
6. Бобков, С.В. Эмбриоидогенез в культуре изолированных пыльников проса / С.В. Бобков // Научно-производственный журнал «Зернобобовые и крупяные культуры», №1 (5) - 2013. С.3-9.
7. Бобков, С.В. Эмбриоиды и растения-регенеранты в культуре изолированных пыльников гороха (Pisum sativum L.) / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2012. – №4. – С. 74-82.
8. Бобков, С.В. Использование питательной среды N6 в культуре in vitro изолированных пыльников гороха / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2016. – №4. – С. 26-30.
9. Бобков, С.В. Репрограмирование изолированных микроспор гороха на эмбриогенный путь развития / С.В. Бобков // Зернобобовые и крупяные культуры. – 2013. – №3. – С. 5-10.
10. Волков, Д.В. Получение дигаплоидных растений рапса из перспективных гибридных комбинаций методом андрогенеза / Д.В Волков [и др.] // Земледелие, агрохимия, кормопроизводство, агроэкология, лесное хозяйство. – 2013. – С. 83-90.
11. Давоян, Э.И. Оптимизация условий культивирования изолированных пыльников риса / Э.И. Давоян, Е.Г. Кучменко, Г.А. Сингильдин // Сельскохозяйственная биология. – 1988. – №4. – С. 59-61.
12. Дьячук, Т.И. Цитологическое подтверждение спорофитного развития микроспор в культуре пыльников тритикале без холодового воздействия / Т.И. Дьячук [и др.] // Сельскохозяйственная биология. – 2010. – №5. – С. 61-65.
13. Ержибаева, Р.С. Скрининг образцов тритикале в культуре пыльников in vitro / Р.С. Ержибаева [и др.] // Генофонд и селекция растений: матер. IV Межд. науч.-практ. конф. (4–6 апреля 2018 г., Новосибирск, Россия). – Новосибирск: ИЦиГ СО РАН, 2018. – С.110-114.
14. Илюшко, М.В. Сравнительный анализ питательных сред для регенерации растений риса из каллуса в культуре пыльников in vitro / М.В. Илюшко // Известия ТСХА. – 2017. – Вып. 2. – С. 126-130.
15. Сельдимирова, О.А. Оценка коллекции генотипов яровой мягкой пшеницы по отзывчивости изолированных пыльников в условиях культуры in vitro / О.А. Сельдимирова, Н.Н. Круглова, В.И. Никонов // Биология, биохимия и генетика. Известия Уфимского научного центра РАН. – 2011. – №2. – С. 22-25.
16. Пилюк, Я.Э. Использование культуры пыльников in vitro в селекции ярового рапса / Я.Э. Пилюк, Т.В. Абадовская, В.В. Морозова // Земледелие и селекция в Беларуси: сб. науч. тр. / ИЗиС. – Минск, 2003. – Вып. 39. – С. 249-256.
17. Шамекова, М.Х. Получение удвоенных гаплоидов ярового рапса с ценными признаками / М.Х. Шамекова [и др.] // News of the National Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan. Серия биологическая и медицинская. – 2015. – №3. – С. 5-10.
18. Amitava Roy and P.K. Saha Isolation of low erucic acid-containing genotype of Indian mustard (Brassica juncea Czern. And Coss.) through F1 hybrid anther culture // African Jornal of Biotechnology Vol. 5 (22), 2006, pp. 2092-2096.
19. Szarejko, I. Anther culture for doubled haploid production in barley (Hordeum vulgare L.) // Doubled haploid production in crop plants / Ed. M. Maluszynski, K.J. Kasha, B.P. Forster, I. Szarejko. Dordrcht: Kluwer academic publishers, 2003. – P. 35-42.
Review
For citations:
Kulinkovich E.N., Piliuk Ya.E., Ermolenko N.L., Sinitsa I.N., Bobko N.N., Barchevskaya E.F. STUDY OF EMBRYOGENIC CAPACITY OF DIFFERENT GENOTYPES OF WINTER RAPE IN IN VITRO CULTURE. Arable Farming and Plant Breeding in Belarus. 2021;(57):371-377. (In Russ.)
Views:
140
Email this article 